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    LONZA 4D-Nucleofector LV 大規模流式細胞核轉染系統
    更新時間:2026-01-19   點擊次數:40次

    LONZA 4D-Nucleofector LV 大規模流式細胞核轉染系統
    ——人T細胞大規模高效轉染


    動物細胞轉染技術多樣,包括化學法、病毒轉導、傳統電穿孔法等。

    化學轉染磷酸鈣沉淀法、DEAE-葡聚糖、脂質體轉染等,操作簡單快捷,但大部分原代細胞、干細胞、細胞系轉染效率低下,僅有少數貼壁細胞系轉染較高效,批次間重復性差。

    使用慢病毒、腺病毒、逆轉錄病毒的病毒轉導技術,雖然轉染效率高,但轉染底物有局限,轉染的基因片段大小需<10kb。且經濟成本相當高昂,需要提前包裝病毒,實驗流程繁復,耗時1-2周。

    傳統電穿孔技術,操作簡單快速,轉染基因限制少,但細胞毒性大、原代細胞成功率很低。

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    LONZA 4D-Nucleofector細胞核轉染系統,是在傳統電穿孔技術的基礎上,針對每一種細胞,優化電脈沖參數、轉染液,使細胞轉染效率、細胞活率得到顯著提升,解決了原代細胞、干細胞、T細胞等使用電穿孔轉染效率低下的問題。同時,4D-Nucleofector可讓外源基因直接穿過核膜進入細胞核,不依賴細胞有絲,實現2小時快速表達。

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    LONZA全qiu共享數據庫,包含超過1500種原代細胞、細胞系的轉染數據,提供包括細胞來源、傳代、培養條件、培養基、到轉染后培養技巧的成熟流程,讓研究者在海量數據支持中快速開展實驗,并取得成功。操作4D-Nucleofector核轉染系統時,只需一鍵調用LONZA內置的轉染程序,即可實現細胞快速、高效轉染,而無需自行摸索轉染條件。

    LONZA 4D-Nucleofector LV大規模流式細胞核轉染系統,可提供單次zui高2×10^9個細胞、封閉、無菌的高效轉染,在T細胞、CHO懸浮細胞、HEK23懸浮細胞、K562細胞等超過700種細胞中大量應用。

    1、封閉、無菌的系統和耗材設計,滿足細胞治療基礎研究需求。
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    2、規模可簡單放大,在4D-Nucleofector X模塊上進行的2×10^4細胞數量的優化轉染方案,可直接在LV上使用。
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    3、符合cGMP要求,可使用符合美國FDA21 CFR part 11、歐盟Annex 11的軟件進行控制,適用于嚴格監管的GMP實驗室。

    ①用戶管理(登陸,不同級別)
    ②具有用戶姓名與時間標記的電子簽名
    ③任何記錄的修改或是數據的創建均被記錄在案
    ④結果報告:失敗報告,以及詳細的問題描述
    ⑤可根據21CFR part11的要求導出數據(加密,預防)
    ⑥審計追蹤(使用記錄、更改記錄)
    ⑦無數據刪除可能


    4、操作靈活,提供單次1mL(最多1×10^8個細胞)的手動加樣、20×1mL(最多2×10^9個細胞)的自動加樣,快速高效。
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    分別用4D-Nucleofector細胞核轉儀X模塊(100μL)、LV模塊(1mL)向包括人T細胞、PBMC、293細胞、CHO細胞在內多種代表性細胞中轉染pmaxGFP載體,實現轉染規模的線性放大。

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    LONZA 4D-Nucleofector LV大規模流式細胞核轉染系統,基因治療基礎研究的不二工具。

    1、作為非病毒轉染技術,適用于不同的基因編輯系統,如鋅指核酸酶(ZFN)、轉錄激活因子樣效應物核酸酶(TALEN)、CRISPR/Cas系統

    2、可轉染多種不同的底物,如DNA、mRNA、蛋白(如Cas9 RNP),由于轉染條件相同,可進行不同底物的簡單共轉染。

    3、常用于應用iPS、CD34+造血干細胞、T細胞的穩定修飾。

    4、技術成熟可靠,有≥80本相關出版物刊載,眾多領域的zhi名學者正在使用4D-Nucleofector技術,quan球發表文章超過10,000,并持續不斷增加中!


    LONZA 4D-Nucleofector大規模流式核轉染系統,作為轉染人原代T細胞的強大方法,與CRISPR和其他基因編輯技術的聯合應用,已成為基因治療基礎研究的理想工具。

     

    參考文獻
    1.Closed-system transposon-mediated manufacture of GMP grade CAR T-cells via the Lonza Nucleofector LV XL. LM Brownrigg,et al. ELSERIER(2020)

    2.Biomimetic mineralized collagen scaffolds and their effect on osteogenic differentiation. L Luo,et al. ELSERIER(2020)

    3.Optimization of clarification process for viral vectors. B Raghavan,et al. ELSERIER(2020)

    4.Generation and testing of clinical-grade exosomes for pancreatic cancer. Mayela Mendt,et al. JCI Insight(2018)

    5.Off the shelf T cell therapies for hematologic malignancies. BJ McCreedy,et al. ELSERIER(2018)

    6.Unlocking the Potential of CRISPR-Based Gene Editing. Andrea Toell. Genetic Engineering & Biotechnology News(2017)

     


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